合作客戶(hù)/
拜耳公司 |
同濟大學(xué) |
聯(lián)合大學(xué) |
美國保潔 |
美國強生 |
瑞士羅氏 |
相關(guān)新聞Info
-
> 可拉伸復合單層電極用于低壓電介質(zhì)執行器——結論、致謝！
> 表面張力儀測試原理及各種測量效果
> 影響表面活性劑臨界膠束濃度(CMC)的因素
> 微流控芯片技術(shù)應對臨床檢驗醫學(xué)考驗
> 稱(chēng)重原理的表面張力儀的最小液滴使用量是多少？
> 江南大學(xué)在新型智能表面活性劑設計開(kāi)發(fā)領(lǐng)域取得突破性研究進(jìn)展
> 中性墨水的研制機理及制造工藝
> 時(shí)間效應在懸滴法測定表面張力中的影響
> 綠色環(huán)?；瘜W(xué)粘合劑的性能特點(diǎn)及其應用
> 蛋白質(zhì)外聚物中多糖的比例——方法
推薦新聞Info
-
> 免罩光水性素色面漆配方、制備方法及步驟
> 固體、鹽溶液表面張力測量及與其在潔凈硅橡膠表面接觸角的關(guān)系研究（三）
> 固體、鹽溶液表面張力測量及與其在潔凈硅橡膠表面接觸角的關(guān)系研究（二）
> 固體、鹽溶液表面張力測量及與其在潔凈硅橡膠表面接觸角的關(guān)系研究（一）
> 電場(chǎng)處理水浮力、及與普通水的表面張力系數測定
> 軟物質(zhì)褶皺形成機制新發(fā)現：液體浸潤、表面張力與接觸線(xiàn)釘扎效應
> LB膜技術(shù)在界面相互作用研究中的應用
> LB膜技術(shù)在生物基材料改性中的應用
> 重軌鋼中氧、硫含量、夾雜物形核率、聚集與界面張力的關(guān)系（四）
> 重軌鋼中氧、硫含量、夾雜物形核率、聚集與界面張力的關(guān)系（三）
合成脂質(zhì)體類(lèi)姜黃素納米粒子的自組裝——結論、致謝！
來(lái)源：上海謂載 瀏覽 1742 次 發(fā)布時(shí)間:2021-11-18
四、結論
核-殼納米顆粒（或粘土結構）的穩定自組裝形成，姜黃素位于核中，納米粘土位于電暈中。粒子的典型尺寸為150 nm，表面帶負電（zeta電位~25 mV）。通過(guò)zeta電位（如圖3所示）、自組裝系統的能量（如圖5（B）和6（B）所示）、20天內的恒定DLS計數率（如ESI?中的圖S3所示），確認顆粒（由0.05%納米粘土形成）的穩定性，以及20天后拍攝的SEM圖像的類(lèi)似粒度分布（如ESI?中的圖S4所示）。組裝證明了疏水（核）和親水（殼）粒子與軟可調界面區共存。自組裝的主要原因是姜黃素納米顆粒之間的主要吸引力和納米粘土片提供的排斥力之間的復雜平衡。疏水區和親水區之間的界面區域在形成和穩定過(guò)程中起著(zhù)關(guān)鍵作用。它充分平衡了排斥屏障與姜黃素納米顆粒中普遍存在的疏水吸引力（如圖5（A）和6（A）所示），這阻止了姜黃素納米顆粒的聚集并導致粘粒組裝的形成。一些粘土顆粒的自組裝被發(fā)現對納米粘土團的大小很敏感，因為它調節了系統中的排斥力。對于這些結構的穩定形成，存在一個(gè)臨界閾值大小的納米粘土團簇（L<80nm和s<100nm）。隨著(zhù)粘土顆粒自組裝電位的增大，一些粘土顆粒的自組裝電位降低。簡(jiǎn)言之，我們最終證明，即使在沒(méi)有任何表面活性劑的情況下，當相互作用力被調整以引起微妙的平衡時(shí)，在無(wú)機粘土血小板存在的情況下也可以形成脂質(zhì)體樣結構或穩定的姜黃素納米粒。所形成的粘粒結構在生物物理學(xué)領(lǐng)域可能有不同的應用。粘土小體組件預計對系統的pH值敏感，因此它可能適用于將裝載在堆芯中的貨物運送到目標位置。
圖6足跡直徑對粘粒組件的影響。（A） 作為界面區域厚度函數的能量變化（L?60 nm，T?298 K，f?0.5，姜黃素納米顆粒半徑R?50 nm，疏水衰減長(cháng)度x0?1 nm，界面張力?40 mN m-1）。（B） 粘粒–粘粒相互作用作為粒間分離D的函數，使用方程（5）計算。對于更大的封裝外形直徑，能量最小值變得更深，對于大于100 nm的s，能量最小值變得更有吸引力。
致謝
這項工作得到了尼赫魯大學(xué)授予NP的訪(fǎng)客獎學(xué)金的支持。NP和KR承認印度政府科學(xué)技術(shù)部的激勵教員獎。我們感謝Akanksha Sharma博士在該大學(xué)高級研究?jì)x器設備的SEM測量方面提供的幫助。NP感謝Matthias Weiss教授的實(shí)驗室設施和有用的討論。
參考
1 Y. Gao, C. Berciu, Y. Kuang, J. Shi, D. Nicastro and B. Xu, ACS Nano, 2013, 7, 9055–9063.
2 G. Helgesen, E. Svasand and A. T. Skjeltorp, J. Phys.: Condens. Matter, 2008, 20, 204127, DOI: 10.1088/0953-8984/20/20/ 204127.
3 M. Grzelczak, J. Vermant, E. M. Furst and L. M. Liz-Mirzan, ACS Nano, 2010, 4, 3591–3605.
4 A. K. Boal, F. Ilhan, J. E. DeRouchey, T. Thurn-Albrecht, T. P. Russell and V. M. Rotello, Nature, 2000, 404, 746–748.
5 Y. Xia, T. D. Nguyen, M. Yang, B. Lee, A. Santos, P. Podsiadlo, Z. Tang, S. C. Glotzer and N. A. Kotov, Nat. Nanotechnol., 2011, 6, 580–587.
6 G. M. Whitesides and B. Grzybowski, Science, 2002, 295, 2418.
7 E. E. Meyer, K. J. Rosenberg and J. Israelachvili, PNAS, 2006, 103, 15739–15746.
8 N. I. Lebovka, Adv. Polym. Sci., 2014, 255, 57–96.
9 A. S. Iglesias, M. Grzelczak, T. Altantzis, B. Goris, J. PerezJuste, S. Bals, G. V. Tendeloo, G. V. Stephan, H. Donaldson Jr, B. F. Chmelka, J. N. Israelachvili and L. M. Liz-Marzan, ACS Nano, 2012, 12, 11059–11065.
10 A. Laouini, C. Jaafar-Maalej, I. Limayem-Blouza, S. Sfar, C. Charcosset and H. Fessi, J. Colloid Sci. Biotechnol., 2012, 1, 147–168.
11 T. M. Allena and P. R. Cullis, Adv. Drug Delivery Rev., 2013, 65, 36–48.
12 M. J. Ostro and P. R. Cullis, Am. J. Hosp. Pharm., 1989, 46, 1576–1587.
13 A. Samad, Y. Sultana and M. Aqil, Curr. Drug Delivery, 2007, 4, 297–305.
14 P. da Silva Malheiros, D. J. Daroit and A. Brandelli, Trends Food Sci. Technol., 2010, 21, 284–292.
15 Z. Nie, A. Petukhova and E. Kumacheva, Nat. Nanotechnol., 2010, 5, 15–25.
16 E. Busseron, Y. Ruff, E. Moulin and N. Giuseppone, Nanoscale, 2013, 5, 7098–7140.
17 M. Rad-Malekshahi, L. Lempsink, M. Amidi, W. E. Hennink and E. Mastrobattista, Bioconjugate Chem., 2016, 27, 3–18.
18 R. M. Gorgoll, T. Tsubota, K. Harano and E. Nakamura, J. Am. Chem. Soc., 2015, 137, 7568–7571.
19 W. Lewandowski, M. Fruhnert, J. Mieczkowski, C. Rockstuhl and E. G′orecka, Nat. Commun., 2015, DOI: 10.1038/ ncomms7590.
20 M. M. Yallapu, M. Jaggi and S. C. Chauhan, Curr. Pharm. Des., 2013, 19, 1994–2010.
21 Y. Manolova, V. Deneva, L. Antonov, E. Drakalska, D. Momekova and N. Lambov, Spectrochim. Acta, Part A, 2014, 132, 815–820.
22 P. Anand, A. B. Kunnumakkara, R. A. Newman and B. B. Aggarwal, Mol. Pharm., 2007, 4, 807.
23 H. Hatcher, R. Planalp, J. Cho, F. M. Torti and S. V. Torti, Cell. Mol. Life Sci., 2008, 65, 1631.
24 Y. Zhang, C. Yang, W. Wang, J. Liu, Q. Liu, F. Huang, L. Chu, H. Gao, C. Li, D. Kong, Q. Liu and J. Liu, Sci. Rep., 2016, 6, 1– 12.
25 X. Yang, Z. Li, N. Wang, L. Li, L. Song, T. He, L. Sun, Z. Wang, Q. Wu, N. Luo, C. Yi and C. Gong, Sci. Rep., 2015, 5, 1–15.
26 D. Wang, S. M. Veena, K. Stevenson, C. Tang, B. Ho, J. D. Suh, V. M. Duarte, K. F. Faull, K. Mehta, E. S. Srivastan and M. B. Wang, Clin. Cancer Res., 2008, 14, 6228–6236.
27 V. Gupta, A. Aseh, C. N. Rios, B. B. Aggarwal and A. B. Mathur, Int. J. Nanomed., 2009, 4, 115–122.
28 R. K. Das, N. Kasoju and U. Bora, Nanomedicine, 2010, 6, 153– 160.
29 S. Bisht, G. Feldmann, S. Soni, R. Ravi, C. Karikar, A. Maitra and A. Maitra, J. Nanobiotechnol., 2007, 5, 3–21.
30 Y. He, Y. Huang and Y. Cheng, Cryst. Growth Des., 2010, 3, 1021–1024.
31 Bhawana, R. K. Basniwal, H. S. Buttar, V. K. Jain and N. Jain, J. Agric. Food Chem., 2011, 59, 2056–2061.
32 N. Pawar and H. B. Bohidar, Colloids Surf., A, 2009, 333, 120– 125.
33 B. Ruzicka, E. Zaccarelli, L. Zulian, R. Angelini, M. Sztucki, A. Moussaid, T. Narayanan and F. Sciortino, Nat. Mater., 2011, 10, 56–60.
34 R. K. Pujala, Dispersion Stability, Microstructure and Phase Transition of Anisotropic Nanodiscs, Springer Thesis, 2014, DOI: 10.1007/978-3-319-04555-9.
35 A. Faghihne jad and H. Zeng, Langmuir, 2013, 29, 12443– 12451.
合成脂質(zhì)體類(lèi)姜黃素納米粒子的自組裝——摘要、介紹
合成脂質(zhì)體類(lèi)姜黃素納米粒子的自組裝——材料和方法